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Completo Cultivo MoKsha PF Tek - cubensis B+

Diário de cultivo completo.
Então, comecei ontem o meu cultivo, fazendo a preparação das seringas pra inoculação. A ideia é fazer cerca de 50 bolos de PF Tek, que terão garrafas PET de 2 L com vermiculita ou perlita ao fundo, pra manter a umidade, como terrários.

PREPARAÇÃO DAS SERINGAS - 26/10/12

Pra preparar as seringas os materiais usados foram os seguintes:
- 6 seringas 10 ml
- 1 seringa 5 ml
- 3 potinhos urina
2012-10-26 19.35.01.jpg
- álcool 70
- água sanitária
- dextrose
- extrato de levedura

Ideia geral:
3 diferentes meios.
O primeiro deles apenas com água e os esporos, uma seringa multiesporos convencional. Uma seringa de 10 e outra de 5, 15 ml. Solução pra preparar a próxima cultura líquida, reserva.
O segundo apenas com 1% de dextrose. Meio de cultura líquida convencional. 3 seringas, 30 ml. Ideia de preparar a cultura dentro da própria seringa vem do MicelioCarioca.
O terceiro com 1% de dextrose + 0,5g/L de extrato de levedura. Li que o cultivo em dextrose, apesar de ser o mais cristalino e, portanto, o mais fácil de se detectar contaminações, também é um dos meios mais incompletos. Rico em açúcares, mas pobre em aminoácidos e mesmo íons em gerais (como, por exemplo, os de fósforo, que os fungos precisam para compor seu DNA), o crescimento em dextrose é mais lento e deficiente que o em, por exemplo, caldo de milho ou Karo. O extrato de levedura é resultado da lise de leveduras, ou seja: contém todos os nutrientes essenciais ao desenvolvimento de um fungo. A concentração vem de Catalfamo & Tyler, 1964 (http://www.erowid.org/archive/rhodium/pdf/psilocybin.submerged.culture.pdf).


Preparo:
- Liguei o fluxo laminar, com as seringas e materiais que eu iria usar dentro do fluxo (depois de dar um banho de álcool 70 nele e em todo o resto). A luz ultravioleta ficou ligada. À esquerda dá pra ver o borrifador de álcool, que era utilizado sempre que eu tirava minhas mãos do fluxo e precisava colocar de volta.
2012-10-26 20.29.24.jpg
- Os potinhos de urina estéreis foram abertos, tiveram a dextrose e extrato de levedura pesados e foram fechados. Tentei ser o mais rápido possível, cerca de 15 segundos com cada potinho aberto.
- Uma proveta foi desinfetada. Para isso, ela foi bem limpa com detergente e esponja e depois ficou durante 15 minutos imersa em água sanitária pura, seguidos de 10 minutos imersa em álcool 70. Depois foi enxaguada várias vezes com água bidestilada.
- Foram medidos os volumes (de água bidestilada) na proveta e adicionados aos potinhos de urina. +3 segundos aberto.
- Os potinhos foram levados para o fluxo laminar e ficaram sob irradiação de ultravioleta durante 20 ~ 25 min.
2012-10-26 20.40.48.jpg
- Os potinhos foram abertos e as seringas preenchidas.

Resultado:
2 seringas (15 ml) de multiesporos
2 seringas (20 ml) de CL em dextrose 1% + extrato de levedura 0,5g/L
3 seringas (20 ml) de CL em dextrose 1%

Por enquanto é isso... As inoculações vão ocorrer entre 5 e 15 dias (os esporos que usei eram frescos). Conforme as coisas forem andando vou editando o post e colocando mais resultados.

*Ah é, desculpem pela má qualidade das fotos... Foram tiradas do celular :/
 
Última edição:
Parabéns ta lindo isso ae mermão MoKsha. So achei meio desnecessário o detergente, levando em conta que você ferveu a argila por 30 minutos. Aplica um dunk de 12 horas nesses bolos e reveste eles com vermiculita, luz 16 horas e muito oxigênio agora de inicio para acelerar a formação dos basidiomas.
Noix :)
 
Mais algumas atualizações...

Aqui o primeiro casing que fizemos, com 4 copos 100% colonizados:

2012-12-16 19.43.10.jpg2012-12-16 19.43.04.jpg

A cobertura é 50% turfa 50% vermiculita pasteurizada - com uma pequena adição de peptona, fonte de nitrogênio orgânico.
No papel filme fiz 20 furos com garfo (ainda não quando tinha tirado a foto) e tapei com fita micropore. Será que é suficiente ou eu ainda deveria abrir uns buracos no balde e tapar com filtro de café?

Aqui algumas das minhas culturas líquidas (por enquanto 4):
2012-12-18 04.07.15.jpg2012-12-18 04.07.21.jpg2012-12-19 01.48.15.jpg2012-12-19 01.48.23.jpg

Foram preparadas com dextrose + extrato de levedura + peptona, em diferentes concentrações. Todas foram tindalizadas (tenho tido excelentes resultados com tindalizações em culturas líquidas).
 
No papel filme fiz 20 furos com garfo (ainda não quando tinha tirado a foto) e tapei com fita micropore. Será que é suficiente ou eu ainda deveria abrir uns buracos no balde e tapar com filtro de café?

Com certeza. faça uns três buracos na parte baixa do balde e tape com filtros (gosto muito da lã acrílica). Você precisa manter uma boa troca gasosa a partir de agora.

Acredito que o Co2, por ser mais denso que o ar, se concentre nas partes baixas saindo pelos buracos, enquanto que o ar é renovado pelos furos superiores através da pressão.

E parabéns MoKsha, tá bonito de se ver tanto capricho! :)
 
Hoje comecei a primeira tentativa de isolamento em ágar...

Preparei 17 placas com meio PDA (200g / L de extrato de batata, 2% glicose, 2% ágar), dentro de fluxo laminar.
Materiais de trabalho:
2012-12-26 10.26.48.jpg

Ágar solidificando:
2012-12-26 10.36.39.jpg 2012-12-26 10.45.51.jpg

Material pronto (3 placas inoculadas lacradas com parafilm + 14 placas não-inoculadas lacradas com filme):
2012-12-26 11.02.04.jpg

Local de acondicionamento das placas não-inoculadas (isopor limpo com hipoclorito + álcool 70, que permanecerá na geladeira):
2012-12-26 11.03.13.jpg
 
Umedeça-a e esterilize no microondas por cerca de 5 minutos.
 
Qual a proporção de vermiculita e água?

Não sei te dizer porque vou borrifando, até que ela fique úmida. Mas não se preocupe, depois da primeira vez que esterilizar (use pouca quantidade pra experimentar) vai ter uma noção da quantidade certa. Se borrifar muita água, boa parte dela vai evaporar no resfriamento.
 
Primeiros resultados...

Bem quando já haviam vários pins no bolos das garrafas, fez por aqui um calorão de 40 graus por quase 3 dias seguidos. Não teve outra, altíssima taxa de abortos:
2012-12-28 18.09.13.jpg

E 2 normais, já numa caixa com sílica, na secagem:
2012-12-28 16.56.32.jpg

EDIT: Tiramos os abortos, fizemos um dunk e eis o 1 flush, já seco:
2013-01-12 17.45.32.jpg

No casing foi só alegria. Algumas fotos do 1 flush:
16715_154750958006306_369973554_n.jpg 312459_154784494669619_10514424_n.jpg

Agora na espera no 2 flush, também.
Eles acabaram ficando tempo demais, o que fez com que eles preteassem desse jeito. Quais são os potenciais malefícios de esporos terem caído na superfície do casing?

Um monstro crescendo em uma cultura líquida (já descartada):
2013-01-03 15.31.59.jpg

Micélio crescendo no ágar:
2013-01-07 10.14.15.jpg2013-01-07 10.14.20.jpg

Por enquanto são essas as atualizações!
 
Última edição:
- Quais são os potenciais malefícios de esporos terem caído na superfície do casing?
Técnicamente não saberia explicar, mais em minha humilde opinião empirica essa esporulação prejudica sim os flushs seguintes, todas as vezes que tive esse problema com atraso na colheita houve baixa ou nula frutificação posterior. Oque dá pra fazer é limpar o excesso de esporos e torcer por novos flushs :)
 
Se o casing estiver coberto com vermiculita é só descartar a camada e por uma nova. Se cairam diretamente em cima do micélio ai fica mais complicado, pode tentar raspar de leve, vai estressar o micelio. Se está com um bom setup ai hein, laboratorio fino, boa aparelhagem e materiais. Com um fluxo laminar é bacana trabalhar com g2g's (graos para graos), tem boas chances de sucesso. Agora com essa temperatura alta, tudo fica mais difícil.
 
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