Saudações!
Venho com muita honra compartilhar meu primeiro cultivo, finalmente estou tendo a possibilidade e o amparo necessário para boas condições de cultivo, conforme desejo há um certo tempo.
É meu primeiro cultivo, seguindo instruções e informações coletadas aqui no fórum e no youtube (canal Esporos no Ar) que me auxiliou na visualização da técnica.
Gratidão a todos aqui presente, muito conhecimento e aprendizado, já consumo cogumelos há certo tempo, mas cultivar meus próprios está sendo mágico, desafiador, mas tenho certeza que muito recompensador! Então só agradeço a toda informação disponível por aqui! Aho!
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DIÁRIO DE CULTIVO
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STRAIN: Thai Pink Buffalo
PROCEDÊNCIA: carimbo de esporos comprado em loja online
---------------------------------------------
SUBSTRATO PARA COLONIZAÇÃO:
---------------------------------------------
(x ) PF TEK (2V + 1FAI + 1A)
Selo com Vermiculita
(x) Sim ( ) Não
GRÃOS:
( ) Milho
( ) Centeio
( ) Trigo
(x) Outro: Arroz Cateto Integral Orgânico
Método de preparação e esterilização do substrato:
Iniciei preparando o ambiente, limpeza intensa e desinfecção da bancada de trabalho com álcool 70.
Separei 6 copos de vidro com a boca mais larga que a base, lavados com clorexidine degermante (detergente hospitalar) e álcool 70.
Triturei 1 + 1/2 copo de arroz cateto integral, optei por realizar o substrato com arroz cateto pois foi a única opção orgânica que encontrei no supermercado onde eu moro, antes de comprar dei uma pesquisada no grupo do Facebook e me deparei com um relato positivo sobre o uso desse arroz, portanto me deixou "segura" de utilizá-lo.
Misturei a farinha de arroz com 2 copos de água filtrada + 4 copos de vermiculita expandida, comprada em casa de jardinagem, obtendo uma mistura não tão úmida mas de forma alguma seca.
Preenchi os copos com a mistura, deixando uma borda de aproximadamente 1cm para realizar o selo de vermiculita. Limpei essa borda com álcool 70 e preenchi com a vermiculita seca.
Cobri com um pedaço de alumínio e vedei com duas camas de fita isolante. Após, cobri com mais duas camadas de alumínio (não vedadas) e coloquei na panela de pressão.
Como minha panela de pressão é pequena, realizei em duas etapas, cada uma com 3 copos. Preenchi o fundo da panela com um pano de prato e coloquei água até a metade da altura dos copos. Após pegar pressão, mantive por 40 minutos cronometrados, em fogo baixo, e desliguei. Verifiquei que foi realizada a esterilização pois coloquei um pedaço de fita crepe usada em esterilização de hospitais, que indica quando a temperatura e pressão adequadas foram atingidas.
Após, armazenei os copos em caixas de isopor, previamente desinfectadas com álcool 70, e deixei esfriar por 24 horas.
Nesse meio tempo, preparei as seringas de esporos, utilizando água destilada esterilizada em copo de vidro, lacrado com papel alumínio e fita isolante, seguindo o mesmo processo dos copos com substrato - 40 minutos na panela de pressão após pegar pressão. Preparei 25ml de água destilada.
As seringas preparei com metade do carimbo de esporos que adquiri (fiquei na dúvida quanto a utilizar metade ou 1/4 do carimbo, mas optei por metade) diluída na água destilada estéril. O carimbo de esporos raspei com lâmina de bisturi estéril, todo ambiente também previamente desinfectado com álcool 70, utilizei luvas cirúrgicas estéreis, diluí bem o conteúdo do carimbo e completei as seringas (duas seringas estéreis de 10ml cada uma) totalizando 20ml.
Mantive essas seringas em geladeira, cobertas com papel alumínio, por 24 horas, para hidratação.
Durante todo procedimento estava com luvas e máscara cirúrgica para evitar contaminação!
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INOCULAÇÃO: Data 10 / 08 / 20
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(x) Seringa Multiesporos
( ) Cultura Líquida
( ) Outro: _________________
GloverBox?
( ) Sim (x) Não
Para inoculação, tirei as seringas da geladeira e deixei ficar em temperatura ambiente por um tempo, enquanto preparei o ambiente para inoculação, desinfectando com álcool 70 e lisoform.
Peguei os copos de subtrato, retirei as duas camas de papel aluminio que deixei soltas e limpei a superfície com álcool 70.
Limpei minhas mãos e braços com clorexidine degermante e após borrifei álcool 70. Limpei as seringas com álcool 70 por fora
Coloquei luva estéril e máscara e iniciei a inoculação de 0,8ml em cada furo, em quatro furos equidistantes, totalizando 3,2ml por copo. A cada troca de copo eu trocava a agulha, utilizando uma nova agulha estéril, para evitar contaminação cruzada entre os copos.
Após realizar a inoculação em cada copo eu já ia tampando os buracos com fita micropore e colocando novamente as duas camadas de papel alumínio. Fiquei na dúvida se deveria deixar essas duas camadas, ou se deixava apenas na camada com micropore, optei por fazer assim seguindo as instruções do canal Esporos no Ar.
Coloquei os copos incubados em caixa de isopor previamente desinfectada com álcool 70. Montei o circuito com aquecedor de aquário e garrafa de vidro, todos interligados em uma rede que depois posso explicar melhor, pois não fui eu quem montou, mas que conecta ao meu computador e consegue transferir os dados de temperatura e umidade em tempo real para acompanhamento!
Por enquanto está mantendo na faixa de 28-29 graus. Na data que coloquei eles na caixa, a umidade estava em 70%, porém agora está na faixa de 39-40%. Como cobri os copos com mais duas camadas de aluminio, acredito que não estão tendo troca gasosa. porém alguém sabe me informar se devo aumenta a umidade? deixar os copos com o micropore exposto para que haja troca? estou indagada com essa questão.
Não abri mais a caixa! Devo manter fechada por mais vinte dias? estão no escuro total.
Vou postar foto de como distribui eles dentro dela, e de como está por fora, o circuito que capta as informações para mim.
Por enquanto é isso! Na expectativa!
Paz e luz!
Venho com muita honra compartilhar meu primeiro cultivo, finalmente estou tendo a possibilidade e o amparo necessário para boas condições de cultivo, conforme desejo há um certo tempo.
É meu primeiro cultivo, seguindo instruções e informações coletadas aqui no fórum e no youtube (canal Esporos no Ar) que me auxiliou na visualização da técnica.
Gratidão a todos aqui presente, muito conhecimento e aprendizado, já consumo cogumelos há certo tempo, mas cultivar meus próprios está sendo mágico, desafiador, mas tenho certeza que muito recompensador! Então só agradeço a toda informação disponível por aqui! Aho!
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DIÁRIO DE CULTIVO
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STRAIN: Thai Pink Buffalo
PROCEDÊNCIA: carimbo de esporos comprado em loja online
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SUBSTRATO PARA COLONIZAÇÃO:
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(x ) PF TEK (2V + 1FAI + 1A)
Selo com Vermiculita
(x) Sim ( ) Não
GRÃOS:
( ) Milho
( ) Centeio
( ) Trigo
(x) Outro: Arroz Cateto Integral Orgânico
Método de preparação e esterilização do substrato:
Iniciei preparando o ambiente, limpeza intensa e desinfecção da bancada de trabalho com álcool 70.
Separei 6 copos de vidro com a boca mais larga que a base, lavados com clorexidine degermante (detergente hospitalar) e álcool 70.
Triturei 1 + 1/2 copo de arroz cateto integral, optei por realizar o substrato com arroz cateto pois foi a única opção orgânica que encontrei no supermercado onde eu moro, antes de comprar dei uma pesquisada no grupo do Facebook e me deparei com um relato positivo sobre o uso desse arroz, portanto me deixou "segura" de utilizá-lo.
Misturei a farinha de arroz com 2 copos de água filtrada + 4 copos de vermiculita expandida, comprada em casa de jardinagem, obtendo uma mistura não tão úmida mas de forma alguma seca.
Preenchi os copos com a mistura, deixando uma borda de aproximadamente 1cm para realizar o selo de vermiculita. Limpei essa borda com álcool 70 e preenchi com a vermiculita seca.
Cobri com um pedaço de alumínio e vedei com duas camas de fita isolante. Após, cobri com mais duas camadas de alumínio (não vedadas) e coloquei na panela de pressão.
Como minha panela de pressão é pequena, realizei em duas etapas, cada uma com 3 copos. Preenchi o fundo da panela com um pano de prato e coloquei água até a metade da altura dos copos. Após pegar pressão, mantive por 40 minutos cronometrados, em fogo baixo, e desliguei. Verifiquei que foi realizada a esterilização pois coloquei um pedaço de fita crepe usada em esterilização de hospitais, que indica quando a temperatura e pressão adequadas foram atingidas.
Após, armazenei os copos em caixas de isopor, previamente desinfectadas com álcool 70, e deixei esfriar por 24 horas.
Nesse meio tempo, preparei as seringas de esporos, utilizando água destilada esterilizada em copo de vidro, lacrado com papel alumínio e fita isolante, seguindo o mesmo processo dos copos com substrato - 40 minutos na panela de pressão após pegar pressão. Preparei 25ml de água destilada.
As seringas preparei com metade do carimbo de esporos que adquiri (fiquei na dúvida quanto a utilizar metade ou 1/4 do carimbo, mas optei por metade) diluída na água destilada estéril. O carimbo de esporos raspei com lâmina de bisturi estéril, todo ambiente também previamente desinfectado com álcool 70, utilizei luvas cirúrgicas estéreis, diluí bem o conteúdo do carimbo e completei as seringas (duas seringas estéreis de 10ml cada uma) totalizando 20ml.
Mantive essas seringas em geladeira, cobertas com papel alumínio, por 24 horas, para hidratação.
Durante todo procedimento estava com luvas e máscara cirúrgica para evitar contaminação!
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INOCULAÇÃO: Data 10 / 08 / 20
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(x) Seringa Multiesporos
( ) Cultura Líquida
( ) Outro: _________________
GloverBox?
( ) Sim (x) Não
Para inoculação, tirei as seringas da geladeira e deixei ficar em temperatura ambiente por um tempo, enquanto preparei o ambiente para inoculação, desinfectando com álcool 70 e lisoform.
Peguei os copos de subtrato, retirei as duas camas de papel aluminio que deixei soltas e limpei a superfície com álcool 70.
Limpei minhas mãos e braços com clorexidine degermante e após borrifei álcool 70. Limpei as seringas com álcool 70 por fora
Coloquei luva estéril e máscara e iniciei a inoculação de 0,8ml em cada furo, em quatro furos equidistantes, totalizando 3,2ml por copo. A cada troca de copo eu trocava a agulha, utilizando uma nova agulha estéril, para evitar contaminação cruzada entre os copos.
Após realizar a inoculação em cada copo eu já ia tampando os buracos com fita micropore e colocando novamente as duas camadas de papel alumínio. Fiquei na dúvida se deveria deixar essas duas camadas, ou se deixava apenas na camada com micropore, optei por fazer assim seguindo as instruções do canal Esporos no Ar.
Coloquei os copos incubados em caixa de isopor previamente desinfectada com álcool 70. Montei o circuito com aquecedor de aquário e garrafa de vidro, todos interligados em uma rede que depois posso explicar melhor, pois não fui eu quem montou, mas que conecta ao meu computador e consegue transferir os dados de temperatura e umidade em tempo real para acompanhamento!
Por enquanto está mantendo na faixa de 28-29 graus. Na data que coloquei eles na caixa, a umidade estava em 70%, porém agora está na faixa de 39-40%. Como cobri os copos com mais duas camadas de aluminio, acredito que não estão tendo troca gasosa. porém alguém sabe me informar se devo aumenta a umidade? deixar os copos com o micropore exposto para que haja troca? estou indagada com essa questão.
Não abri mais a caixa! Devo manter fechada por mais vinte dias? estão no escuro total.
Vou postar foto de como distribui eles dentro dela, e de como está por fora, o circuito que capta as informações para mim.
Por enquanto é isso! Na expectativa!
Paz e luz!
