16 de março de 2008-04-04
Limpei a cozinha com água sanitária, coloquei a glove em Box (artesanal) em cima da pia.
Limpei a Glove por fora e por dentro com um spray de 1000ml, com 2 colheres de água sanitária e completada com água. Deixei por um tempo e passei um pano limpo que deixei dentro da glove. Burrifei álcool 70 % e deixei por algum tempo.
Tomei banho com sabonete Protex.
![cultivo março 2008 003.jpg cultivo março 2008 003.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13948-34f603764b63c8604c2b0b707e7912cc.jpg)
Preparação das Seringas
Material
- água sanitária
- burrifador de 1000 ml
- 4 potes de fezes com a pazinha ( de preferência aquele q vem lacrado esterelizado)
- 4 seringas de 5ml com agulha
- 2 ampolas de água destilada de 10 ml cada
- spray com álcool 70% isopropilico
- faca
- papel alumínio
- fita crepe
- caneta q escreve em vidro
Coloquei os potes ( com etiquetas com o nome da strain) , as seringas ( com o nome da strain), as ampolas e uma faca dentro da glove in Box, burrifei álcool 70% em toda a glove e no material, deixei agir por alguns minutos.
Com a seringas retirei 5 ml da ampola e distribui nos potes abrindo e fechando rapidamente os potes. Abri o carimbo e com a ajuda da pazinha raspei os esporos delicadamente para dentro do pote, puxei um pouco da água do pote e joguei no carimbo , para amolecer a parte grudado no carimbo e aproveitar melhor. Fechei os potes e misturei a água com os esporos em movimentos circulares.
Com a agulha da seringa puxei o conteúdo do pote, e fechei as seringas , enrolando com papel alumínio e fita crepe onde coloquei a identificação da strain. Coloquei as seringas na geladeira ( tempo mínimo para hidratar os esporos 48 horas )
![cultivo março 2008 005.jpg cultivo março 2008 005.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13949-29cc76274c1637ba9f27a8391847f68b.jpg)
17 de março de 2008
Preparação do substrato
Material
- 4 pacotes de milho de pipoca
- panela de pressão
- calcário ou bicarbonato de sódio.
- água sanitária
- 14 vidros de palmito
- 1 vidro de 1500 ml
- escorredor de macarrão
- secador de cabelo
- fita microporo
- caneta q escreve em vidro
Em uma panela de pressão, despejei os 4 pacotes de milho, cobri com água e acrescentei 2 colheres de sopa de água sanitária. Deixei em repouso por 24 horas , esterilizando o interior dos grãos.
18 de março
Lavei bem o milho no escorredor de macarrão para retirar toda água sanitária, coloquei na panela, cobri com água e adicionei 2 colheres de sopa de calcário, fechei a panela, deixei em repouso por 24 horas. Para neutraliz o ph.
19 de março
Lavei bem o milho no escorredor retirando todo o calcário, coloquei o milho na panela de pressão, cobri com água, fechei e deixei no fogo por 30 a 40 minutos.
Retirei o milho da panela, e escorri no escorredor, com ajuda do secador, sequei bem o milho ( nesse caso fiz esse processo 6 vezes devido a quantidade de milho).
Furei as tampas dos vidros no meio, um furo circular com 1 a 2 diametro.
Lavei os vidros e tampas com água sanitária, sequei com pano com álcool, liguei o forno, e coloquei os vidros seco no forno, enquanto não os utilizava.
Distribui o milho nos vidros ( 1 pacote 4 vidros de palmito, exceto o vidro maior) , fechei com as tampas e coloquei por dentro e por fora microporo no buraco (criando um respiro).
Mantive os vidros na geladeira, por falta de tempo de esterelizar.
21 de março
![cultivo março 2008 006.jpg cultivo março 2008 006.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13950-ef85f0c20cc75742a747221cbd99c476.jpg)
Esterelização Fracionada ou por tyndalização
Na panela de pressão, coloquei água que alcança-se um pouco acima da metade dos potes, deixei a água ferver e coloquei os potes na panela sem tampar, deixando semi aberto, deixei por 40 minutos.
Coloquei os vidros na incubadora, mantendo uma temperatura de 30 a 37º C. Minha incubadora é um freezer desligado, com um aquecedor de aquário de 5w, mantém a temperatura de 29 a 32ºC, então coloquei os vidros ainda quente, para aumentar a temperatura. Por 16 horas na incubadora, deixei um pouco mais devido a falta de tempo.
22 de março
Mesmo processo, mas desta vez fechei a panela de pressão, mais 16 horas na incubadora.
23 de março
Mesmo processo, mas desta vez fechei a panela de pressão, mais 16 horas na incubadora.
Na esterilização perdi 4 vidros que estouraram devido o choque térmico.
24 de março
Inoculação
Esterilizei a glove in Box com água sanitária e álcool 70%.
Coloquei os vidros ( marcados com o nome da strain que vou colocar)e as seringas no glove, burrifei álcool 70% em todo o material, deixei alguns minutos esterilizando.
B+ : Fiz dois vidros, abri os vidros e coloquei 2,5 ml em cada, fechando rapidamente.
Pênis Envy: Fiz dois vidros, abri os vidros e coloquei 2,5 ml em cada, fechando rapidamente.
Mex: 2 vidros e 1 vidro grande 1,5; 1,5; e 2,0 ml
Costa rica: 4 vidros 1,2 em cada vidro + ou –
Incubação
Coloquei os vidros em caixas de papelão e coloquei dentro da incubadora, mantendo uma temperatura de 26 a 29ºC. com ajuda de um aquecedor de aquário de 5 w, apoiado num papel alumínio. Na parte debaixo do frezzer.
29 de março
Colonização
Observei os vidros, alguns como o o mex e costa rica apresentam, pequenas manchas marrons avermelhadas , contaminação, os micélios ganharam, o negocio é torcer.
O pênis Envy, não apresenta nem micélio nem contaminação.
O B+ esta colonizando e não apresenta contaminação.
O mex esta colonizando, mas apresenta uma contaminação de 1%.
O Costa Rica esta colonizando bem, apresenta contaminação nem em todos os potes de 0,5%.
04 de abril
O penis começou a colonizar, um vidro 0,5% e o outro um pouco mais 1%, sem contaminação.
O B+ esta 70 a 80% colonizado, sem contaminação aparente.
O Mex esta 60 a 70% colonizado, com uma contaminação de 1%.
O costa Rica esta 70% colonizado, sem contaminação aparente
Ae crianças, vamos vencer, Fungo de elite, osso duro de roer, coloniza um coloniza geral, contaminante vai se f.... rsrsr
07 de abril
Observei os vidros:
Penis Envy 6: 2 vidros de 800ml - 1 vidro 5% colonizado o outro 1% colonizado, sem contaminantes
B+: 2 vidros de 800ml - ambos 90% colonizado, sem contaminantes
Mex: 2 vidros de 800ml e 1 de 1500ml - 95% colonizado, com 0,5% de contaminantes marrom avermelhado no fundo do vidro e nas paredes do vidro, não aderem ao milho
Costa Rica: 4 vidros de 800 ml - 95% colonizado, alguns vidros apresenta, 0,2% de contaminantes marrom avermelhado no fundo do vidro.
Ajuda queridos amigos, este fuingo ainda naum tinha tido no cultivo, mas me parece naum atacar o micelio, de cor marrom escura avermelhado, sempre fica aderido ao vidro, foco pequeno de 0,5 a 0,2 % por vidro.
![cultivo 1009 015.jpg cultivo 1009 015.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13951-9479dbfa3f2176271cddf1b27b6cafbf.jpg)
![cultivo março 2008 009.jpg cultivo março 2008 009.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13980-1542c0e50b8a13c349adf6e70c6b60fd.jpg)
![cultivo março 2008 010.jpg cultivo março 2008 010.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13981-b08c52e5e424e8b3005b9093d37be1b7.jpg)
![cultivo março 2008 013.jpg cultivo março 2008 013.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13982-9f9bf16cdc9559e18fce20a259e6e8cc.jpg)
![3º cultivo 29-10 026.jpg 3º cultivo 29-10 026.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13983-5e31ab661af304a8c4e7f384982124cc.jpg)
Nesse cultivo irei experimentar varias formas na 2º fase , utilizando varios materiais para verificar a forma mais viavel para mim, sendo meu 3º cultivo, e terceira tentativa, pois meus 2 ultimos foram atacados por contaminantes :
1º Metodo ( Costa Rica no vidro de Palmito com vermiculita):
Material
- 1 pote de 800 ml com 200 ml de milho colonizado de Costa Rica
- vermiculita
- borrifador 1000ml/2 tampas de agua oxigenada
Peguei um dos potes de costa rica, com 200 ml de milho colonizado, adicionei vermiculita pura ate a metade do vidro, e borrifei agua com agua oxigenada em cima , fechando o vidro rapidamente, coloquei o vidro na incubadora onde ficara colonizando por 5 dias.
Esse metodo utilizei no meu cultivo anterior, frutifica com segurança, menor possibilidade de adquirir contaminantes,mais pratico, porém os cogumelos são pequenos e poucos, rende em torno de 5 a 7 cogumelos por semana.
Dia 08 de abril
2º Metodo ( Mexican dutch king, vidro de 1500ml, utilizando esterco, vermiculita, calcario e pó de café):
Material
- 1 vidro de 1500ml com 1/3 de milho colonizado de mex
- vermiculita
- calcario
- pó de café
- borrifador de agua 1000ml/2 tampa de agua oxigenada
Num vidro de palmito de 800ml, Misturei 50% de vermiculita, 50% de esterco bovino , 1 colher de sobremesa de calcario e um colher de sobremesa de café em pó. Misturei bem. e Burrifei um pouco da agua no vidro, coloquei no microondas por 10 minutos e fechei o vidro.
Esperei esfriar totalmente, e misturei com a milho colonizado no proprio vidro de 1500ml, com ajuda de uma colher esterelizada dentro da glove in box, previamente esterelizada, na verdade acho q esse vidro tem capacidade maior, acho q de uns 2 litros.
Coloquei o vidro na incubadora onde ficara 5 dias colonizando.
Limpei a cozinha com água sanitária, coloquei a glove em Box (artesanal) em cima da pia.
Limpei a Glove por fora e por dentro com um spray de 1000ml, com 2 colheres de água sanitária e completada com água. Deixei por um tempo e passei um pano limpo que deixei dentro da glove. Burrifei álcool 70 % e deixei por algum tempo.
Tomei banho com sabonete Protex.
![cultivo março 2008 003.jpg cultivo março 2008 003.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13948-34f603764b63c8604c2b0b707e7912cc.jpg)
Preparação das Seringas
Material
- água sanitária
- burrifador de 1000 ml
- 4 potes de fezes com a pazinha ( de preferência aquele q vem lacrado esterelizado)
- 4 seringas de 5ml com agulha
- 2 ampolas de água destilada de 10 ml cada
- spray com álcool 70% isopropilico
- faca
- papel alumínio
- fita crepe
- caneta q escreve em vidro
Coloquei os potes ( com etiquetas com o nome da strain) , as seringas ( com o nome da strain), as ampolas e uma faca dentro da glove in Box, burrifei álcool 70% em toda a glove e no material, deixei agir por alguns minutos.
Com a seringas retirei 5 ml da ampola e distribui nos potes abrindo e fechando rapidamente os potes. Abri o carimbo e com a ajuda da pazinha raspei os esporos delicadamente para dentro do pote, puxei um pouco da água do pote e joguei no carimbo , para amolecer a parte grudado no carimbo e aproveitar melhor. Fechei os potes e misturei a água com os esporos em movimentos circulares.
Com a agulha da seringa puxei o conteúdo do pote, e fechei as seringas , enrolando com papel alumínio e fita crepe onde coloquei a identificação da strain. Coloquei as seringas na geladeira ( tempo mínimo para hidratar os esporos 48 horas )
![cultivo março 2008 005.jpg cultivo março 2008 005.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13949-29cc76274c1637ba9f27a8391847f68b.jpg)
17 de março de 2008
Preparação do substrato
Material
- 4 pacotes de milho de pipoca
- panela de pressão
- calcário ou bicarbonato de sódio.
- água sanitária
- 14 vidros de palmito
- 1 vidro de 1500 ml
- escorredor de macarrão
- secador de cabelo
- fita microporo
- caneta q escreve em vidro
Em uma panela de pressão, despejei os 4 pacotes de milho, cobri com água e acrescentei 2 colheres de sopa de água sanitária. Deixei em repouso por 24 horas , esterilizando o interior dos grãos.
18 de março
Lavei bem o milho no escorredor de macarrão para retirar toda água sanitária, coloquei na panela, cobri com água e adicionei 2 colheres de sopa de calcário, fechei a panela, deixei em repouso por 24 horas. Para neutraliz o ph.
19 de março
Lavei bem o milho no escorredor retirando todo o calcário, coloquei o milho na panela de pressão, cobri com água, fechei e deixei no fogo por 30 a 40 minutos.
Retirei o milho da panela, e escorri no escorredor, com ajuda do secador, sequei bem o milho ( nesse caso fiz esse processo 6 vezes devido a quantidade de milho).
Furei as tampas dos vidros no meio, um furo circular com 1 a 2 diametro.
Lavei os vidros e tampas com água sanitária, sequei com pano com álcool, liguei o forno, e coloquei os vidros seco no forno, enquanto não os utilizava.
Distribui o milho nos vidros ( 1 pacote 4 vidros de palmito, exceto o vidro maior) , fechei com as tampas e coloquei por dentro e por fora microporo no buraco (criando um respiro).
Mantive os vidros na geladeira, por falta de tempo de esterelizar.
21 de março
![cultivo março 2008 006.jpg cultivo março 2008 006.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13950-ef85f0c20cc75742a747221cbd99c476.jpg)
Esterelização Fracionada ou por tyndalização
Na panela de pressão, coloquei água que alcança-se um pouco acima da metade dos potes, deixei a água ferver e coloquei os potes na panela sem tampar, deixando semi aberto, deixei por 40 minutos.
Coloquei os vidros na incubadora, mantendo uma temperatura de 30 a 37º C. Minha incubadora é um freezer desligado, com um aquecedor de aquário de 5w, mantém a temperatura de 29 a 32ºC, então coloquei os vidros ainda quente, para aumentar a temperatura. Por 16 horas na incubadora, deixei um pouco mais devido a falta de tempo.
22 de março
Mesmo processo, mas desta vez fechei a panela de pressão, mais 16 horas na incubadora.
23 de março
Mesmo processo, mas desta vez fechei a panela de pressão, mais 16 horas na incubadora.
Na esterilização perdi 4 vidros que estouraram devido o choque térmico.
24 de março
Inoculação
Esterilizei a glove in Box com água sanitária e álcool 70%.
Coloquei os vidros ( marcados com o nome da strain que vou colocar)e as seringas no glove, burrifei álcool 70% em todo o material, deixei alguns minutos esterilizando.
B+ : Fiz dois vidros, abri os vidros e coloquei 2,5 ml em cada, fechando rapidamente.
Pênis Envy: Fiz dois vidros, abri os vidros e coloquei 2,5 ml em cada, fechando rapidamente.
Mex: 2 vidros e 1 vidro grande 1,5; 1,5; e 2,0 ml
Costa rica: 4 vidros 1,2 em cada vidro + ou –
Incubação
Coloquei os vidros em caixas de papelão e coloquei dentro da incubadora, mantendo uma temperatura de 26 a 29ºC. com ajuda de um aquecedor de aquário de 5 w, apoiado num papel alumínio. Na parte debaixo do frezzer.
29 de março
Colonização
Observei os vidros, alguns como o o mex e costa rica apresentam, pequenas manchas marrons avermelhadas , contaminação, os micélios ganharam, o negocio é torcer.
O pênis Envy, não apresenta nem micélio nem contaminação.
O B+ esta colonizando e não apresenta contaminação.
O mex esta colonizando, mas apresenta uma contaminação de 1%.
O Costa Rica esta colonizando bem, apresenta contaminação nem em todos os potes de 0,5%.
04 de abril
O penis começou a colonizar, um vidro 0,5% e o outro um pouco mais 1%, sem contaminação.
O B+ esta 70 a 80% colonizado, sem contaminação aparente.
O Mex esta 60 a 70% colonizado, com uma contaminação de 1%.
O costa Rica esta 70% colonizado, sem contaminação aparente
Ae crianças, vamos vencer, Fungo de elite, osso duro de roer, coloniza um coloniza geral, contaminante vai se f.... rsrsr
07 de abril
Observei os vidros:
Penis Envy 6: 2 vidros de 800ml - 1 vidro 5% colonizado o outro 1% colonizado, sem contaminantes
B+: 2 vidros de 800ml - ambos 90% colonizado, sem contaminantes
Mex: 2 vidros de 800ml e 1 de 1500ml - 95% colonizado, com 0,5% de contaminantes marrom avermelhado no fundo do vidro e nas paredes do vidro, não aderem ao milho
Costa Rica: 4 vidros de 800 ml - 95% colonizado, alguns vidros apresenta, 0,2% de contaminantes marrom avermelhado no fundo do vidro.
Ajuda queridos amigos, este fuingo ainda naum tinha tido no cultivo, mas me parece naum atacar o micelio, de cor marrom escura avermelhado, sempre fica aderido ao vidro, foco pequeno de 0,5 a 0,2 % por vidro.
![cultivo 1009 015.jpg cultivo 1009 015.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13951-9479dbfa3f2176271cddf1b27b6cafbf.jpg)
![cultivo março 2008 009.jpg cultivo março 2008 009.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13980-1542c0e50b8a13c349adf6e70c6b60fd.jpg)
![cultivo março 2008 010.jpg cultivo março 2008 010.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13981-b08c52e5e424e8b3005b9093d37be1b7.jpg)
![cultivo março 2008 013.jpg cultivo março 2008 013.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13982-9f9bf16cdc9559e18fce20a259e6e8cc.jpg)
![3º cultivo 29-10 026.jpg 3º cultivo 29-10 026.jpg](https://teonanacatl.org/data/attachments/13/13983-5e31ab661af304a8c4e7f384982124cc.jpg)
Nesse cultivo irei experimentar varias formas na 2º fase , utilizando varios materiais para verificar a forma mais viavel para mim, sendo meu 3º cultivo, e terceira tentativa, pois meus 2 ultimos foram atacados por contaminantes :
1º Metodo ( Costa Rica no vidro de Palmito com vermiculita):
Material
- 1 pote de 800 ml com 200 ml de milho colonizado de Costa Rica
- vermiculita
- borrifador 1000ml/2 tampas de agua oxigenada
Peguei um dos potes de costa rica, com 200 ml de milho colonizado, adicionei vermiculita pura ate a metade do vidro, e borrifei agua com agua oxigenada em cima , fechando o vidro rapidamente, coloquei o vidro na incubadora onde ficara colonizando por 5 dias.
Esse metodo utilizei no meu cultivo anterior, frutifica com segurança, menor possibilidade de adquirir contaminantes,mais pratico, porém os cogumelos são pequenos e poucos, rende em torno de 5 a 7 cogumelos por semana.
Dia 08 de abril
2º Metodo ( Mexican dutch king, vidro de 1500ml, utilizando esterco, vermiculita, calcario e pó de café):
Material
- 1 vidro de 1500ml com 1/3 de milho colonizado de mex
- vermiculita
- calcario
- pó de café
- borrifador de agua 1000ml/2 tampa de agua oxigenada
Num vidro de palmito de 800ml, Misturei 50% de vermiculita, 50% de esterco bovino , 1 colher de sobremesa de calcario e um colher de sobremesa de café em pó. Misturei bem. e Burrifei um pouco da agua no vidro, coloquei no microondas por 10 minutos e fechei o vidro.
Esperei esfriar totalmente, e misturei com a milho colonizado no proprio vidro de 1500ml, com ajuda de uma colher esterelizada dentro da glove in box, previamente esterelizada, na verdade acho q esse vidro tem capacidade maior, acho q de uns 2 litros.
Coloquei o vidro na incubadora onde ficara 5 dias colonizando.