Caros amigos, depois de pesquisar muito e acompanhar de perto vários cultivos de vocês, venho humildemente compartilhar minhas primeiras experiências com o cultivo do cubensis.
Esse é o mais simples de minha série de primeiros cultivos, onde estou explorando a maioria das TEK que encontrei por aqui.
STRAIN: AUSTRALIAN
PROCEDÊNCIA: Carimbo de esporos vindo de uma amiga.
Método de preparação e esterilização do substrato:
Transformei arroz integral orgânico em farinha média utilizando o liquidificador, atentando para não bater demais para garantir que o substrato tivesse menor chance de se compactar.
Em uma bacia limpa com alcool 70 misturei a vermiculita com a água, assim que a mistura se mostrou homogênea adicionei a FAI testei o ponto de hidratação da mistura, onde duas gotas d'agua caiam quando eu comprimia o substrato com o máximo de minha força.
Feito isso o substrato foi colocado em copos de vidro de 200ml, recebendo a primeira camada de papel laminado que foi presa ao copo utilizando fita isolante. Após colocar uma segunda camada de papel isolante, apertada de forma bem rente ao entorno do recipiente, todos os vidros foram levados a PP por 1h30min, iniciando com agua a 2/3 da altura dos copos e com um pano de prato limpo colocado no fundo da panela para evitar trincamentos.
Por falta de tempo assim que a panela perdeu a pressão ela foi levada a geladeira por 4h30min, e finalmente repousando mais 2h em temperatura ambiente para estabilizar e regular o calor em toda a panela.
O preparo do ambiente foi feito em duas etapas, inicialmente o banheiro de meu quarto teve possíveis fontes de contaminantes retiradas do mesmo (escovas de dente, pente, produtos pessoais, etc.) e foi limpo com uma mistura de agua e agua sanitária do chão até o teto, deixei o ambiente fechado por 2h. Após isso, já de banho tomado e devidamente equipado de luvas, touca, mascara e afins, iniciei uma segunda limpeza com álcool 70.
Ainda com o ambiente saturado de alcool fui trazendo todos os materiais envolvidos na inoculação, todos préviamente limpos com alcool 70, onde foram limpos novamente, inclusive meu Glovebroxa.
Sumemo, Glovebroxa™ feito com uma caixa de papelão, muito papel laminado e dois toques de sazon.
No dia 01/05/17 tivemos o primeiro sinal de micélio!
-------------------------------------------------
TERRÁRIO
-------------------------------------------------
Garrafa Pet!
Vi um outro companheiro as utilizando como terrário e decidi aniversariar o primeiro bolo para frutificar em um desses.
Cortei a garrafa, fiz um fundo de perlita hidratada, coloquei um suporte de papel laminado e coloquei o bolo depois de 5h de dunk seguido de um roll em vermiculita seca. No lugar da tampa coloquei polyfill para facilitar a troca gasosa (ou eu deveria manter com a tampa para induzir a pinagem???) e foi isso aí.
Além disso eu cortei a parte superior para que encaixasse dentro da garrafa, fazendo com que fosse possível subir e descer a parte encaixada para ventilar o terrário de forma mais segura, mas acho que calculei mal a altura e cortei parte da garrafa para facilitar o manuseio, o que fez com que eventualmente fique apertado para fazer a ventilação com a tampa superior, enfim...
Aparentemente o ambiente tem se mantido a 100% de umidade pelas gotas que tem se formado nas paredes da garrafa.
Os outros copos eu farei em terrários diferentes e postarei no tópico com o decorrer do processo.
Esse é o mais simples de minha série de primeiros cultivos, onde estou explorando a maioria das TEK que encontrei por aqui.
STRAIN: AUSTRALIAN
PROCEDÊNCIA: Carimbo de esporos vindo de uma amiga.
---------------------------------------------
SUBSTRATO PARA COLONIZAÇÃO:
---------------------------------------------
(X) PF TEK (2V + 1FAI + 1A)
Selo com Vermiculita
(X) Sim ( ) Não
SUBSTRATO PARA COLONIZAÇÃO:
---------------------------------------------
(X) PF TEK (2V + 1FAI + 1A)
Selo com Vermiculita
(X) Sim ( ) Não
Método de preparação e esterilização do substrato:
Transformei arroz integral orgânico em farinha média utilizando o liquidificador, atentando para não bater demais para garantir que o substrato tivesse menor chance de se compactar.
Em uma bacia limpa com alcool 70 misturei a vermiculita com a água, assim que a mistura se mostrou homogênea adicionei a FAI testei o ponto de hidratação da mistura, onde duas gotas d'agua caiam quando eu comprimia o substrato com o máximo de minha força.
Feito isso o substrato foi colocado em copos de vidro de 200ml, recebendo a primeira camada de papel laminado que foi presa ao copo utilizando fita isolante. Após colocar uma segunda camada de papel isolante, apertada de forma bem rente ao entorno do recipiente, todos os vidros foram levados a PP por 1h30min, iniciando com agua a 2/3 da altura dos copos e com um pano de prato limpo colocado no fundo da panela para evitar trincamentos.
Por falta de tempo assim que a panela perdeu a pressão ela foi levada a geladeira por 4h30min, e finalmente repousando mais 2h em temperatura ambiente para estabilizar e regular o calor em toda a panela.
-------------------------------------------------
INOCULAÇÃO: Data 22 / 04 / 2017
-------------------------------------------------
(X) Seringa Multiesporos
( ) Cultura Líquida
GloverBox?
(X) Sim ( ) Não
INOCULAÇÃO: Data 22 / 04 / 2017
-------------------------------------------------
(X) Seringa Multiesporos
( ) Cultura Líquida
GloverBox?
(X) Sim ( ) Não
O preparo do ambiente foi feito em duas etapas, inicialmente o banheiro de meu quarto teve possíveis fontes de contaminantes retiradas do mesmo (escovas de dente, pente, produtos pessoais, etc.) e foi limpo com uma mistura de agua e agua sanitária do chão até o teto, deixei o ambiente fechado por 2h. Após isso, já de banho tomado e devidamente equipado de luvas, touca, mascara e afins, iniciei uma segunda limpeza com álcool 70.
Ainda com o ambiente saturado de alcool fui trazendo todos os materiais envolvidos na inoculação, todos préviamente limpos com alcool 70, onde foram limpos novamente, inclusive meu Glovebroxa.
Sumemo, Glovebroxa™ feito com uma caixa de papelão, muito papel laminado e dois toques de sazon.
Utilizando uma vela para flambar a agulha entre um bolo e outro, os copos foram inoculados dentro do glovebroxa o mais rapidamente possível em quatro furos equidistantes entre si próximos a borda do copo. Os buracos feitos pela agulha foram fechados com micropore.
Após finalizados os serviços os copos foram levados a uma caixa de papelão e mantidos em uma armário até o fim da colonização.
Após finalizados os serviços os copos foram levados a uma caixa de papelão e mantidos em uma armário até o fim da colonização.
No dia 01/05/17 tivemos o primeiro sinal de micélio!
A incubação não foi padronizada em todos os copos, 60% dos copos ainda estão entre 85 e 90% de colonização 5 dias após o primeiro copor chega a 100%.
Substrato 100% colonizado Data 13 / 05 / 17
Substrato 100% colonizado Data 13 / 05 / 17
-------------------------------------------------
TERRÁRIO
-------------------------------------------------
Garrafa Pet!
Cortei a garrafa, fiz um fundo de perlita hidratada, coloquei um suporte de papel laminado e coloquei o bolo depois de 5h de dunk seguido de um roll em vermiculita seca. No lugar da tampa coloquei polyfill para facilitar a troca gasosa (ou eu deveria manter com a tampa para induzir a pinagem???) e foi isso aí.
Além disso eu cortei a parte superior para que encaixasse dentro da garrafa, fazendo com que fosse possível subir e descer a parte encaixada para ventilar o terrário de forma mais segura, mas acho que calculei mal a altura e cortei parte da garrafa para facilitar o manuseio, o que fez com que eventualmente fique apertado para fazer a ventilação com a tampa superior, enfim...
Aparentemente o ambiente tem se mantido a 100% de umidade pelas gotas que tem se formado nas paredes da garrafa.
